Συνεισφορές συγγραφέα:Η SB και η ΥΕΚ συνέλαβαν και σχεδίασαν τη δομή και το περιεχόμενο της αξιολόγησης. Ο SB ανέλυσε τα δεδομένα και έγραψε το χειρόγραφο. Οι EEM, MS, HB, NM, LK και YEK συνέβαλαν στη συγγραφή — κριτική και επεξεργασία. Η ΥΕΚ επέβλεψε το έργο. Όλοι οι συγγραφείς έχουν διαβάσει και έχουν συμφωνήσει με τη δημοσιευμένη έκδοση του χειρογράφου.

Το γλυκοσίδιο του cistanche μπορεί επίσης να αυξήσει τη δραστηριότητα του SOD στους ιστούς της καρδιάς και του ήπατος και να μειώσει σημαντικά την περιεκτικότητα σε λιποφουσκίνη και MDA σε κάθε ιστό, καθαρίζοντας αποτελεσματικά διάφορες δραστικές ρίζες οξυγόνου (OH-, H2O2, κ.λπ.) και προστατεύοντας από βλάβη του DNA που προκαλείται από ρίζες ΟΗ. Οι φαινυλαιθανοειδείς γλυκοσίδες του Cistanche έχουν ισχυρή ικανότητα δέσμευσης ελεύθερων ριζών, υψηλότερη αναγωγική ικανότητα από τη βιταμίνη C, βελτιώνουν τη δραστηριότητα του SOD στο εναιώρημα σπέρματος, μειώνουν την περιεκτικότητα σε MDA και έχουν μια ορισμένη προστατευτική δράση στη λειτουργία της σπερματικής μεμβράνης. Οι πολυσακχαρίτες Cistanche μπορούν να ενισχύσουν τη δραστηριότητα των SOD και GSH-Px σε ερυθροκύτταρα και ιστούς πνευμόνων πειραματικά γηρασμένων ποντικών που προκαλούνται από D-γαλακτόζη, καθώς και να μειώσουν την περιεκτικότητα σε MDA και κολλαγόνο στους πνεύμονες και στο πλάσμα και να αυξήσουν την περιεκτικότητα σε ελαστίνη. ένα καλό αποτέλεσμα σάρωσης στο DPPH, παρατείνει το χρόνο της υποξίας σε γηρασμένα ποντίκια, βελτιώνει τη δραστηριότητα του SOD στον ορό και καθυστερεί τον φυσιολογικό εκφυλισμό του πνεύμονα σε πειραματικά γηρασμένα ποντίκια Με τον κυτταρικό μορφολογικό εκφυλισμό, τα πειράματα έχουν δείξει ότι το Cistanche έχει την καλή αντιοξειδωτική ικανότητα και έχει τη δυνατότητα να είναι φάρμακο για την πρόληψη και τη θεραπεία ασθενειών της γήρανσης του δέρματος. Ταυτόχρονα, η εχινακοσίδη στο Cistanche έχει σημαντική ικανότητα να καθαρίζει τις ελεύθερες ρίζες DPPH και έχει την ικανότητα να καθαρίζει δραστικά είδη οξυγόνου και να αποτρέπει την αποικοδόμηση του κολλαγόνου που προκαλείται από ελεύθερες ρίζες, και έχει επίσης μια καλή επίδραση επιδιόρθωσης στη βλάβη των ανιόντων από τις ελεύθερες ρίζες θυμίνης.

Κάντε κλικ στο Οφέλη Cistanche Tablets

【Για περισσότερες πληροφορίες:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Χρηματοδότηση:Αυτή η έρευνα χρηματοδοτήθηκε από το OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Μαρόκο, Grant No. PR008.

Δήλωση του Συμβουλίου Θεσμικής Αναθεώρησης:Δεν εφαρμόζεται.

Δήλωση ενημερωμένης συναίνεσης:Δεν εφαρμόζεται.

Δήλωση διαθεσιμότητας δεδομένων:Η κοινή χρήση δεδομένων δεν ισχύει για αυτό το άρθρο, καθώς δεν δημιουργήθηκαν ή αναλύθηκαν σύνολα δεδομένων κατά τη διάρκεια της παρούσας μελέτης.

Σύγκρουση συμφερόντων:Οι συγγραφείς δηλώνουν ότι η έρευνα διεξήχθη απουσία εμπορικών ή οικονομικών σχέσεων που θα μπορούσαν να ερμηνευθούν ως πιθανές συγκρούσεις συμφερόντων.

βιβλιογραφικές αναφορές

1. Τεχνολογία φυτικών κυττάρων—Ο συνεργάτης σας στην καλλιέργεια φυτικών ιστών. Εφαρμογή της Τεχνολογίας Φυτικών Κυττάρων στη Βιομηχανία Καλλυντικών. Διαθέσιμο στο διαδίκτυο:

2. Έρευνα Προτεραιότητας. Το μέγεθος της αγοράς εκχυλισμάτων φυτών θα φτάσει περίπου τα 22,49 δισεκατομμύρια USD έως το 2030.

3. Έρευνα Προτεραιότητας. Μέγεθος αγοράς φυτικών εκχυλισμάτων αξίας περίπου 22,49 δισ. USD έως το 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, Β.; Beri, K. Plant Stem Cells in Cosmetics: Current Trends and Future Directions. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, Α.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Η καλλιέργεια φυτικών κυττάρων ως αναδυόμενη τεχνολογία για την παραγωγή ενεργών καλλυντικών συστατικών. Eng. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. In vitro Plant Tissue Culture: Means for Production of Biological Active Compounds. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Advances in Plant Biotechnological Approaches for Propagation and Production of Bioactive Compounds. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, Α.; Gilaberte, Υ.; Gonzalez, S.; Juarranz, Α. Περιβαλλοντικοί στρεσογόνοι παράγοντες στη γήρανση του δέρματος. Μηχανιστικές Ενοράσεις. Εμπρός. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, Η.; Alhajj, Μ.; Sharma, S. Anatomy, Skin (Integument), Epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, Φλόριντα, ΗΠΑ, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Μοριακοί Μηχανισμοί Δερματικής Γήρανσης και Προσεγγίσεις Αντιγήρανσης. Int. J. ΜοΙ. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, Μ.; Pierzak, Μ.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Βιοδραστικές ενώσεις για την υγεία του δέρματος: Μια ανασκόπηση. Nutrients 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, Τ.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Skin-Resident Innate Lymphoid Cells–Cutaneous Innate Guardians and Regulators. Trends Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, Ε.; Safari, Ε.; Mojsoska, Β.; Jenssen, Η.; Prabhala, BK Τρέχουσα κατάσταση των μεταφορέων SLC και ABC στο δέρμα και η σχέση τους με τους μεταβολίτες του ιδρώτα και τις ασθένειες του δέρματος. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkers of Cellular Senescence and Skin Aging. Εμπρός. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Skin Changes κατά τη διάρκεια της γήρανσης. In Biochemistry and Cell Biology of Ageing: Part II Clinical Science; Springer: Βερολίνο/Χαϊδελβέργη, Γερμανία, 2019; Τόμος 91, σελ. 249–280.

17. Rinnerthaler, Μ.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, Α.; Richter, K. Oxidative Stress in Aging Human Skin. Biomolecules 2015, 5, 545-589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, Α.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Το Fernblock αποτρέπει τη βλάβη των δερματικών κυττάρων που προκαλείται από την ορατή και την υπέρυθρη ακτινοβολία. Int. J. ΜοΙ. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, Α.; Luiten, R. Οξειδωτικά συμβάντα και γήρανση του δέρματος. Aging Res. Αναθ. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, Α.; Baron, E. Ultraviolet Photobiology in Dermatology. Στο υπεριώδες φως στην ανθρώπινη υγεία, τις ασθένειες και το περιβάλλον. Springer: Βερολίνο/Χαϊδελβέργη, Γερμανία, 2017; Τόμος 996, σ. 89–104.

21. Samtiya, Μ.; Aluko, RE; Dhewa, Τ.; Moreno-Rojas, JM Πιθανά οφέλη για την υγεία των βιοενεργών συστατικών που προέρχονται από φυτικές τροφές: Μια επισκόπηση. Foods 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, Μ.; Mahdi, Ι.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, Μ.; Sobeh, M. Phytochemical Profiles of the Leaf Extract of Ximenia Americana Var. Το Caffra και οι αντιοξειδωτικές, αντιβακτηριδιακές και αντιγηραντικές του δραστηριότητες In vitro και στο Caenorhabditis Elegans: A Cosmeceutical and Dermatological Approach. Οξείδιο. Med. Κύτταρο. Λόνγκεφ. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Υ.; Wu, Υ.; Wang, M. Bioactive Substances of Plant Origin 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, Κ.; Huang, Χ.; Ahn, DU Δομή, Αποτελεσματικότητα, Μηχανισμοί και Εφαρμογές Αντιοξειδωτικών Φυτικών και Ζωικών Αντιοξειδωτικών: Μια Ανασκόπηση. Antioxidants 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Αειφόρος παραγωγή πολυφαινολών και αντιοξειδωτικών από φυτικές καλλιέργειες in vitro. Στη Βιοεπεξεργασία Συστημάτων Φυτών In Vitro. Springer: Βερολίνο/Χαϊδελβέργη, Γερμανία, 2018; σελ. 225–269.

26. Namdeo, Α. Εκκίνηση φυτικών κυττάρων για παραγωγή δευτερογενών μεταβολιτών: Ανασκόπηση. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69-79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, Α. Βιοεπεξεργασία καλλιεργειών φυτικών κυττάρων για μαζική παραγωγή στοχευμένων ενώσεων. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, Ποιότητα φρούτων MJ, αντιοξειδωτική ικανότητα και περιεκτικότητα σε φλαβονοειδή σε βατόμουρα βιολογικής και συμβατικής καλλιέργειας. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Production and Engineering of Terpenoids in Plant Cell Culture. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, Ε.; Corell, Μ.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Μοριάνα, Α.; Meléndez-Martínez, AJ Επίδραση της ρυθμιζόμενης ελλειμματικής άρδευσης σε παραμέτρους ποιότητας, καροτενοειδή και φαινολικές ουσίες διαφορετικών ποικιλιών τομάτας (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, Β.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. A Comparative Physiological and Transcriptional Study of Carotenoid Biosynthesis in White and Red Grapefruit (Citrus Paradisi Macf.). Δέντρο Genet. Genomes 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, Χ.; Miao, Χ.; Ling, TC; Εμφάνιση, PL Πρόσφατες εξελίξεις στο βιοδιυλιστήριο της ασταξανθίνης από το Haematococcus Pluvialis. Bioresour. Τεχνολ. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Η βιοτεχνολογική παραγωγή καροτενοειδών με χρήση υποστρωμάτων χαμηλού κόστους επηρεάζεται από παραμέτρους καλλιέργειας: Μια ανασκόπηση. Int. J. ΜοΙ. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Πολυφαινόλες φυτών: Χημικές Ιδιότητες, Βιολογικές Δραστηριότητες και Σύνθεση. Angew. Chem. Int. Εκδ. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, Α.; Ferreira, Ρ.; Oliveira, J.; Rocha, Ι.; Faria, Ν. Ετερόλογη παραγωγή ρεσβερατρόλης σε βακτηριακούς ξενιστές: τρέχουσα κατάσταση και προοπτικές. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, Η.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, Α. Παραγωγή ρεσβερατρόλης σε ανασυνδυασμένους μικροοργανισμούς. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, Μ.; Schneider, Κ.; Kristensen, Μ.; Borodina, Ι.; Nielsen, J. Engineering Yeast for High-Level Production of Stilbenoid Antioxidants. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspar, Ρ.; Dudnik, Α.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis για την παραγωγή Stilbene. Στα Πρακτικά του 28ου Διεθνούς Συνεδρίου για τις Πολυφαινόλες 2016, Βιέννη, Αυστρία, 11 Ιουλίου 2016; DTU Δανία: Kongens Lyngby, Δανία, 2016.

39. Kallscheuer, Ν.; Vogt, Μ.; Stenzel, Α.; Gätgens, J.; Bott, Μ.; Marienhagen, J. Κατασκευή ενός στελέχους πλατφόρμας Corynebacterium Glutamicum για την παραγωγή στιλβενίων και (2S)-φλαβανονών. Metab. Eng. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​Β.; Liu, J. Resveratrol: A Review of Plant Sources, Synthesis, Stability, Modification, and Food Application. J. Sci. Τροφίμων Αγρ. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Υ.; Lin, Υ.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Regulating Malonyl-CoA Metabolism via Synthetic Antisense RNAs for Enhanced Biosynthesis of Natural Products. Metab. Eng. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Βιοδραστηριότητα και βιοδιαθεσιμότητα του φυτοενίου και στρατηγικές για τη βελτίωση της παραγωγής του. Phytochem. Αναθ. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, Κ.; Vidal-Limon, Η.; Hidalgo, D.; Moyano, Ε.; Golenioswki, Μ.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, μια αποτελεσματική στρατηγική για τη βιοτεχνολογική παραγωγή βιοδραστικών ενώσεων υψηλής προστιθέμενης αξίας σε εργοστάσια φυτικών κυττάρων. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, Ο.; Bonfill, Μ.; Moyano, Ε.; Onrubia, Μ.; Mirjalili, Μ.; Cusido, R.; Palazon, J. Biotechnological Production of Taxol and Related Taxoids: Current State and Prospects. Anti-Cancer Agents Med. Chem. Πρώην. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109-121. [CrossRef]

45. Matsubara, Κ.; Kitani, S.; Yoshioka, Τ.; Morimoto, Τ.; Fujita, Υ.; Yamada, Y. Η καλλιέργεια υψηλής πυκνότητας των κυττάρων Coptis Japonica αυξάνει την παραγωγή βερβερίνης. J. Chem. Τεχνολ. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Παραγωγή Ποδοφυλλοτοξίνης από Καλλιέργειες Φυτικών Κυττάρων του Podophyllum Hexandrum σε Bioreactor. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, Η.; Xu, J.; Liu, Χ.; Liu, Β.; Deng, X. Light Effect on Carotenoids Production and Expression of Carotenogenesis Genes in Citrus Callus of Four Genotypes. Acta Physiol. Φυτό. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, Α.; Kobtrakul, Κ.; Vimolmangkang, S. Insights into Antioxidant Activities and Anti-Skin-Aging Potential of Callus Extract from Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, Μ.; Włodarczyk, Α.; Studzi 'nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, Α.; Kotwicka, Μ.; Thiem, B. Effect of Pentacyclic Triterpenoids-Rich Callus Extract of Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach για τη βιωσιμότητα, τη μορφολογία και τον πολλαπλασιασμό των ινοβλαστών του φυσιολογικού ανθρώπινου δέρματος. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Κοριβή, Μ.; Lin, F.-Y.; Li, Μ.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Το Trans-Cinnamic Acid εξασθενεί τη φωτογήρανση που προκαλείται από την UVA μέσω της αναστολής της AP-1 ενεργοποίησης και της επαγωγής των αντιοξειδωτικών γονιδίων που διαμεσολαβούνται Nrf2- στους ινοβλάστες του ανθρώπινου δέρματος. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Παρασκευή, Χαρακτηρισμός και Βιολογικές Δραστηριότητες Συστατικών Τοπικής Αντιγήρανσης σε Εκχύλισμα Κάλου Citrus Junos. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Υ.; Lee, Η.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Ευεργετικά αποτελέσματα της Διπλέκτης Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract on Aging and Antioxidants in Vitro και in Vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, Α.; Bahramnejad, Β.; Abuzaripoor, Μ.; Shahmansouri, Ε.; Zarei, MA Establishment of Callus and Cell Suspension Cultures of Granny Smith Apple Fruit and Antityrosinase Activity of Their Extracts. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, Ρ.; Liudvytska, Ο.; Kicel, Α.; Dziedzic, Α.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Αξιοποίηση του Φωτοπροστατευτικού Δυναμικού του Φυτοχημικά Τυποποιημένου Εκχυλίσματος Φύλλων Ελιάς (Olea Europaea L.) σε ινοβλάστες ανθρώπινου δέρματος που ακτινοβολούνται με UVA. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, Η.; Hong, Υ.; Tran, Q.; Cho, Η.; Kim, Μ.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. Ένας νέος ρόλος για το Ginsenoside RG3 στην Αντιγήρανση μέσω της Λειτουργίας Μιτοχονδρίων σε Ανθρώπινους Δερματικούς Ινοβλάστες που ακτινοβολούνται με υπεριώδη ακτινοβολία. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, Η.; Hong, Υ.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Anti-Aging Effects of Piper Cambodianum P. Fourn. Εκχύλισμα σε φυσιολογικά ανθρώπινα δερματικά ινοβλαστικά κύτταρα και ένα μοντέλο επούλωσης πληγών σε ποντίκια. Clin. Interv. Γήρανση 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, Κ.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Elicitation of Pueraria Candollei Var. Τα Mirifica Suspension Cells Υπόσχονται Αντιοξειδωτική Δυνατότητα, Υπονοώντας Αντιγηραντική Δραστηριότητα. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Anti-Aging Activities of Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. Τροπ. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, Κ.-Υ.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Επιδράσεις του εκχυλίσματος Tiarella Polyphylla D. Don Callus στη φωτογήρανση σε κύτταρα Hs68 ινοβλαστών ανθρώπινης ακροποσθίας. Nat. Κέντρο. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Χαλαγέρη, Γ.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, Ρ.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Substituting Plant Vegetative Parts with Callus Cell Extracts: Case Study with Woodfordia Fruticosa Kurz.–Ένα ισχυρό συστατικό σε σκευάσματα περιποίησης δέρματος. Σ. Αφρ. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, Ρ.; Alam, MB; Lee, S.-H. Προστασία της φωτογήρανσης που προκαλείται από την υπεριώδη ακτινοβολία με υδατικό εκχύλισμα τσαγιού Fuzhuan-Brick μέσω MAPKs/Nrf2- μεσολαβούμενης μείωσης ρύθμισης του MMP-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ου, Τ.-Τ.; Κοριβή, Μ.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. Οι δερματοπροστατευτικές επιδράσεις της Lucidone από το Lindera Erythrocarpa μέσω της επαγωγής αντιοξειδωτικών γονιδίων που διαμεσολαβούνται από Nrf{10} σε κερατινοκύτταρα του ανθρώπινου δέρματος που ακτινοβολούνται με UVA. J. Λειτουργία. Foods 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, Η.-Ι.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Χαρά.; Choi, Η.; Lee, JH Anti-Aging Effects of Leontopodium Alpinum (Edelweiss) Callus Culture Extract through Transcriptome Profiling. Genes 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Anti-Oxidant and Anti-Aging Activities of Callus Culture from Three Rice Varieties. Cosmetics 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, Κ.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Πιθανή χρήση εκχυλίσματος φρούτων Amla (Phyllanthus Emblica L.) για την προστασία των κερατινοκυττάρων του δέρματος από φλεγμονή και απόπτωση μετά από ακτινοβολία UVB. Antioxidants 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, Α.; Mitjans, Μ.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, βουλευτής; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) ως πηγή βιοδραστικών ενώσεων: Πολυφαινολικό προφίλ, κυτταροτοξικότητα και κυτταροπροστατευτικές ιδιότητες σε διαφορετικές κυτταρικές σειρές. Εμπρός. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Preparation and Characterization of Callus Extract from Pyrus Pyrifolia και Διερεύνηση των Επιπτώσεών του στην Αναγέννηση του Δέρματος. Cosmetics 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, Μ.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, Ρ.; Monti, DM; Wink, M. Isolation of Myricitrin and 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin from Syzygium Samarangense και αξιολόγηση της συμμετοχής τους στην προστασία των κερατινοκυττάρων έναντι του οξειδωτικού στρες μέσω της ενεργοποίησης της οδού Nrf-2. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Μικροπολλαπλασιασμός του τζίντζερ (Zingiber Officinale Roscoe) «Bentong» και αξιολόγηση των δευτερογενών μεταβολιτών και των αντιοξειδωτικών δραστηριοτήτων του σε σύγκριση με το φυτό που πολλαπλασιάζεται συμβατικά. Plants 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ectopic Expression of Production Pigment Anthocyanin Pigment 1 (PAP1) Βελτιώνει τις αντιοξειδωτικές και αντιμελανογόνες ιδιότητες των τριχωτών ριζών Ginseng (Panax Ginseng CA Meyer). Antioxidants 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, Α.; Tito, Α.; Leone, Α.; Oliviero, Τ.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Τα εκχυλίσματα τριχωτών ριζών Colucci, G. Brassica Rapa προάγουν την αποχρωματισμό του δέρματος ρυθμίζοντας την παραγωγή και τη διανομή μελανίνης. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, Α.; Del Giudice, R.; Raiola, Α.; Amoresano, Α.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Malvidin και παράγωγα κυανιδίνης από το Açai Fruit (Euterpe Oleracea Mart.) Αντιμετωπίζουν το οξειδωτικό στρες που προκαλείται από την υπεριώδη ακτινοβολία σε αθανατισμένους ινοβλάστες. J. Photochem. Photobiol. Β 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, Α.; Carola, Α.; Arciello, S.; Tortora, Α.; Filippini, L.; Monoli, Ι.; Cucchiara, Μ.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ Ένα μείγμα πεπτιδίων και σακχάρων που προέρχονται από φυτικά κυτταρικά τοιχώματα αυξάνει τις αντιδράσεις άμυνας των φυτών στο στρες και εξασθενεί τις μοριακές αλλαγές που σχετίζονται με τη γήρανση στα καλλιεργημένα κύτταρα του δέρματος. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Ζ.; Park, SY; Hwang, Ε.; Zhang, Μ.; Seo, SA; Lin, Ρ.; Yi, T. Thymus Vulgaris Ανακουφίζει τις βλάβες του δέρματος που προκαλείται από την ακτινοβολία UVB μέσω της αναστολής του MAPK/AP-1 και της ενεργοποίησης του αντιοξειδωτικού συστήματος Nrf2-ARE. J. Cell. ΜοΙ. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, Α.; Carola, Α.; Bimonte, Μ.; Barbulova, Α.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, Ι.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Εκχύλισμα βλαστοκυττάρων ντομάτας, που περιέχει αντιοξειδωτικές ενώσεις και χηλικούς παράγοντες μετάλλων, προστατεύει τα κύτταρα του δέρματος από βλάβες που προκαλούνται από βαρέα μέταλλα. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543-552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Ζ.-Υ.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Chitosan Elicitation of Isatis Tinctoria L. Hairy Root Cultures for Enhancing Flavonoid Productivity and Gene Expression and Related Antioxidant Activity. Ind. Crops Παρ. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, Τ.; Umar, S.; Mujib, Α.; Sharma, βουλευτής; Rajasekharan, Ρ.; Zafar, Ν.; Frukh, A. Secondary Metabolism of Pharmaceuticals in the Plant in vitro Cultures: Strategies, Approaches, and Limitations to Achieving Higher Yield. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Υ.; Kim, J.-Y.; Jeong, Τ.-Κ.; Yun, K.-S.; Paek, Κ.-Υ.; Park, S.-Y. Παραγωγή βιομάζας και βιοδραστικών ενώσεων από τυχαίες καλλιέργειες ρίζας του Polygonum multiflorum χρησιμοποιώντας βιοαντιδραστήρες Air-Lift. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, Ρ.; Padh, Η.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: A Suitable Biological System for Studying Secondary Metabolic Pathways in Plants. Eng. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, Ι.; Królicka, Α.; Wysoki ´nska, H. Establishment of Salvia Officinalis L. Hairy Root Cultures for the Production of Rosmarinic Acid. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, Β.; Królicka, Α.; Wysoki ´nska, H. Hairy Roots of Dracocephalum Moldavica: Περιεκτικότητα σε Rosmarinic Acid and Antioxidant Potential. Acta Physiol. Φυτό. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, Α.; Cahill, DM Elite Hairy Roots of Ocimum Basilicum ως νέα πηγή ροσμαρινικού οξέος και αντιοξειδωτικών. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, Μ.; Hajimehdipoor, Η.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Συγκριτική Μελέτη Περιεκτικότητας Ροσμαρινικού Οξέος σε Μερικά Φυτά της Οικογένειας Labiatae. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, Α.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Plant Tissue Cultures as Sources of Ingredients for Skin Care Applications. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, ΝΝ; Tian, ​​L. The Multiplicity of Hairy Root Cultures: Prolific Possibilities. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, Μ.-Α.; Lee, Κ.; Kim, Κ.; Hyun, TK Η υπερπαραγωγή ανθοκυανίνης σε τριχωτές ρίζες τζίνσενγκ ενισχύει τις αντιοξειδωτικές, αντιμικροβιακές και αντι-ελαστικές δραστηριότητές τους. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, Ε.; Sobeh, Μ.; Devkota, KP; Boukcim, Η.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Micropropagation of Opuntia and Other Cacti Species Through Axillary Shoot Proliferation: A Comprehensive Review. Εμπρός. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. In Vitro Culture of Lavenders (Lavandula spp.) and the Production of Secondary Metabolites. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, Α.; Debnath, S. Ο μικροπολλαπλασιασμός επηρεάζει όχι μόνο τη μορφολογία του καρπού του βατόμουρου χαμηλού θάμνου (Vaccinium Angustifolium Ait.) αλλά και τις φαρμακευτικές του ιδιότητες. In Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Μόντρεαλ, QC, Καναδάς, 17–19 Ιουνίου 2013; σελ. 137–142.

90. Dakah, Α.; Zaid, S.; Σουλεϊμάν, Μ.; Abbas, S.; Wink, M. In vitro Propagation of the Medicinal Plant Ziziphora Tenuior L. and Evaluation of Its Antioxidant Activity. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, Α.; John, SST; Narayanan, R. Προκαλούμενη από το φως Παραγωγή Αντικαταθλιπτικών Ενώσεων σε Ετιολωμένες Καλλιέργειες Βλαστών Hypericum Hookerianum Wight & Arn.(Hypericaceae). Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, Α.; Wysoki 'nska, Η. Αντιοξειδωτική Δραστικότητα Εκχυλισμάτων από in Vitro Καλλιέργειες Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, Ε.; Quta, L.; Alu'datt, Μ.; Al-Shara, Β.; Abu-Zaiton, A. In vitro Propagation and Characterization of Phenolic Content μαζί με Αντιοξειδωτικές και Αντιμικροβιακές Δραστηριότητες του Cichorium Pumilum Jacq. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, Μ.; Khawar, Κ.; Lu, G.; Mannan, Α.; Ζία, Μ. In Vitro Propagation of Caralluma tuberculata και Αξιολόγηση Αντιοξειδωτικού Δυναμικού. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, Α.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Ζ.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Μικροπολλαπλασιασμός Alocasia Longiloba Miq και Συγκριτικές Αντιοξειδωτικές Ιδιότητες Αιθανολικών Εκχυλισμάτων του Φυτού που Καλλιεργείται στο Χώρο, Πολλαπλασιασμένος in Vitro και σε Vitro-Προερχόμενο κάλλος. Plants 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, Μ.; Sugimoto, Κ.; Iwase, A. Plant Callus: Mechanisms of Induction and Repression. Plant Cell 2013, 25, 3159-3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, Dedifferentiation, Totipotency, Somatic Embryogenesis: What these Terms Mean in the Era of Molecular Plant Biology; Εμπρός. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Plant Cell Culture Technologies: A Promising Alternatives to Produce High-Value Secondary Metabolites. Αραβας. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Plant Cell Culture Technology: A New Ingredient Source. CARE 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cell Culture: An Innovative Approach for Production of Plant Actives; Russell Publishing Ltd.: Brasted, UK, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Παραγωγή βιομάζας και βιοδραστικών ενώσεων από καλλιέργειες κυτταρικού εναιωρήματος των Panax Quinquefolium L. και Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Στην παραγωγή βιομάζας και βιοδραστικών ενώσεων με χρήση τεχνολογίας Bioreactor. Springer: Βερολίνο/Χαϊδελβέργη, Γερμανία, 2014; σελ. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, Ν.; Chalabi, Μ.; Azami, M. Shikonin Παραγωγή από Callus Culture of Onosma Bulbotrichom ως ενεργό φαρμακευτικό συστατικό. Ιράν. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, Η.; Zhang, L.; Xiao, P. Παραγωγή φλαβονοειδών και πολυσακχαρίτη με προσθήκη διεγέρτη σε διαφορετικές διεργασίες κυτταρικής καλλιέργειας του Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Φυτό. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Methyl Jasmonate Stimulates 20-Hydroxyecdysone Production in Cell Suspension Cultures of 'Achyranthes Bidentata'. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, Μ.; Tito, Α.; Carola, Α.; Barbulova, Α.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, Μ.; Hill, J. Dolichos Cell Culture Extract for Protection against UV Damage. Cosmet Toilet 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, Μ.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. A Novel Engineered Dermis for in Vitro Photodamage Research. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, Ε.; Scalambra, Ε.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, Α.; Manfredini, S. Activity and Stability Studies of Verbascoside, a Novel Antioxidant, in Dermo-Cosmetic and Pharmaceutical Topical Formulations. Molecules 2011, 16, 7068-7080. [CrossRef]

108. Bimonte, Μ.; Carola, Α.; Tito, Α.; Barbulova, Α.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis για Εφαρμογές Αντιρυτιδικών και Τόνωσης Δέρματος. Cosmet. Τουαλέτα. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, Β.; Rahman, Κ.; Zheng, C.-J.; Han, Τ.; Qin, L. Medicinal Plant Cell Suspension Cultures: Pharmaceutical Applications and High-Yielding Strategies for the Desired Secondary Metabolites. Κριτ. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, Ν.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: A Tool for Enriching the Bioactive Composition of Foods. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, Α.; Boland, R. Molecular Aspects of the Early Stages of Elicitation of Secondary Metabolite in Plants. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, Μ.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: A Biotechnological Tool for Enhanced Production of Secondary Metabolites in Hairy Root Cultures. Eng. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, Η.; Ullah, MA; Jan, Η.; Siddiquah, Α.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Διαδραστικές επιδράσεις μονοχρωματικών φώτων ευρέος φάσματος στη φυτοχημική παραγωγή, αντιοξειδωτικές και βιολογικές δραστηριότητες καλλιεργειών Solanum Xanthocarpum Callus. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, Τ.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, Μ.; Cappetta, Ε.; Tucci, M. Abiotic Stresses Elicitation Ενισχύει την παραγωγικότητα του Cardoon Calli ως βιο-εργοστάσια για την παραγωγή εξειδικευμένων μεταβολιτών. Antioxidants 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, Η.; Chen, J.; Xiao, Υ.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, Ρ.; Chen, W.; Zhang, L. Δίκτυο Γονιδίου σε Μεταβολίτη για Βιοσύνθεση Λιγνανών σε καλλιέργειες τριχωτών ριζών Isatis Indigotica που προέρχονται από MeJA. Εμπρός. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, Τ.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, Χ.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Βελτίωση της συσσώρευσης βιοδραστικών ενώσεων σε κυτταρικές καλλιέργειες Orostachys Cartilaginous A. Bor. μέσω της πρόκλησης με σαλικυλικό οξύ και της επίδρασης του εκχυλίσματος κυττάρων στη βιοδραστική δραστηριότητα. Ind. Crops Παρ. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, Παραγωγή Βιομάζας και Φαρμακευτικών Φαινολικών Ενώσεων που προκαλείται από PM Eicitor σε καλλιέργεια κυτταρικού εναιωρήματος του φοίνικα χουρμά (Phoenix Dactylifera L.). Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, ΜΕΑ; Londoño, GAC Βελτιστοποίηση της Παραγωγής Φλαβονοειδών σε Καλλιέργειες Φυτικών Κυττάρων της Thevetia Peruviana που προκαλείται με Ιασμονικό μεθύλιο και Σαλικυλικό οξύ. Μπραζ. Αψίδα. Biol. Τεχνολ. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, Η.; Shoyama, Υ.; Putalun, W. Η πρόκληση ιασμονικού μεθυλίου ενισχύει την παραγωγή γλυκυρριζίνης σε καλλιέργειες τριχωτών ριζών γλυκύρριζας Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, Α.; Cheniany, M. Stimulation of Phenolic Compounds Accuulation and Antioxidant Activity in in vitro Culture of Salvia Tebesana Bunge in Response to Nano-TiO2 and Methyl Jasmonate Elicitors. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, Τ.; Tonglairoum, Ρ.; Keawracha, Ρ.; Wongsa, Τ.; Kongbangkerd, Α.; Limmongkon, Α. Ενίσχυση ενώσεων στιλβενίου και αντιφλεγμονώδης δράση του ιασμονικού μεθυλεστέρα και της κυκλοδεξτρίνης που προκαλείται από την καλλιέργεια τριχωτή ρίζα φιστικιού. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, Β.; Abberton, MT; Morlock, GE Elicitation of Antioxidant Metabolites in Musa Species in vitro Shoot Culture με χρήση σακχαρόζης, θερμοκρασίας και Jasmonic Acid. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, Ν.; Golkar, Ρ.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulation of Callus Growth and Secondary Metabolites in Different Thymus Species and Zataria Multiflora Micropropagated under ZnO Nanoparticles Stres. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, Α.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, Μ.; Kamil, Α.; Mashwani, Z.-R. Νανοσωματίδια αργύρου που προκαλούνται in vitro καλλιέργειες τύλου για συσσώρευση βιομάζας και δευτερογενών μεταβολιτών στο Caralluma Tuberculata. Artif. Cels Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, Ι.-Μ.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Επίδραση νανοσωματιδίων αργύρου στην παραγωγή φαινολικών ενώσεων και βιολογικές δραστηριότητες σε καλλιέργειες τριχωτών ριζών του Cucumis anguria. Acta Biol. Κρεμασμένος. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, Α.; Yücesan, Β.; Gürel, Ε.; Kausar, R.; Zia, M. CuO Nanoparticles Significantly Influence in Vitro Culture, Steviol Glycosides, and Antioxidant Activities of Stevia rebaudiana Bertoni. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanoparticles with Entrapped -Tocopherol: Synthesis, Characterization, and Controlled Release. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, Α.; Lojkowska, Ε.; Staniszewska, Ι.; Malinski, Ε.; Szafranek, J. Identification of Secondary Metabolites in In Vitro Culture of Ammi Majus Treated with Elicitors. In Proceedings of the IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tampere, Φινλανδία, 2–7 Ιουλίου 2000; σελ. 255–258.

129. Fazal, Η.; Abbasi, BH; Ahmad, Ν.; Ali, Μ.; Shujait Ali, S.; Khan, Α.; Wei, D.-Q. Βιώσιμη παραγωγή βιομάζας και βιομηχανικά σημαντικών δευτερογενών μεταβολιτών σε κυτταρικές καλλιέργειες Selfheal (Prunella Vulgaris L.) που προέρχονται από νανοσωματίδια αργύρου και χρυσού. Artif. Cels Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Ζ.; Tan, RX; Wu, J. Αποτελεσματική παραγωγή και ανάκτηση διτερπενοειδών τανσινονών σε καλλιέργειες τριχωτών ριζών Salvia Miltiorrhiza με in Situ προσρόφηση, εξαγωγή και ημι-συνεχή λειτουργία. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Ζ.; Keyhanfar, Μ.; Ghanadian, M. Biotic Elicitation for Scopolamine Production by Hairy Root Cultures of Datura Metel. ΜοΙ. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, Μ.; Wong, Η.; Teng, W. Effects of Elicitation on the Production of Saponin in Cell Culture of Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674-677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Effect of Elicitors on the Enhancement of Podophyllotoxin Biosynthesis in Suspension Cultures of Linum Album. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, Μ.; Mallol, Α.; Moyano, Ε.; Morales, C.; Piñol, MT Εκκίνηση διαφορετικών φαινοτύπων μετασχηματισμένης ρίζας Panax Ginseng για βελτιωμένη παραγωγή Ginsenoside. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, Κ.-Υ. Παραγωγή δευτερογενών μεταβολιτών από καλλιέργειες κυττάρων και οργάνων: Στρατηγικές και προσεγγίσεις για τη βελτίωση της βιομάζας και τη συσσώρευση μεταβολιτών. Καλλιέργεια οργάνων φυτικών κυττάρων ιστού. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, Α.; Gampe, Ν.; Gelana, F.; György, Z. Ενίσχυση της συσσώρευσης ροζαβινών στη Rhodiola Rosea L. Φυτά που καλλιεργούνται in vitro με πρόδρομη διατροφή. Agronomy 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, Ν.; Sharifi, Μ.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album Using Coniferaldehyde and Methylenedioxycinnamic Acid. Προετοιμασία. Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, Κ.; Hokkanen, J.; Tolonen, Α.; Mattila, S.; Hohtola, Α. Biosynthesis of Hyperforin and Adhyperforin from Amino Acid Precursors in Shoot Cultures of Hypericum Perforatum. Phytochemistry 2007, 68, 1038-1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, Κ.-Υ. Βελτιωμένη παραγωγή Ginsenosides σε εναιωρηματικές καλλιέργειες Ginseng με Μέτρια Στρατηγική Αναπλήρωσης. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, Κ.-Υ. Βελτιωμένη παραγωγή παραγώγων καφεϊκού οξέος σε καλλιέργειες εναιωρήματος Echinacea Purpurea με στρατηγική μεσαίας αναπλήρωσης. Αψίδα. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Ενισχυμένη παραγωγή και απελευθέρωση ταξόλης σε καλλιέργειες εναιωρήματος κυττάρων Taxus Chinensis με επιλεγμένους οργανικούς διαλύτες και τροφοδοσία σακχαρόζης. Biotechnol. Επαιτώ. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, Α.; Malviya, Ν.; Yadav, S. Επισκόπηση και Αρχές Βιομηχανικής: Οι Οδηγοί των Τεχνολογιών Omics. Στις Τεχνολογίες Omics και στη Βιομηχανική. Elsevier: Άμστερνταμ, Ολλανδία, 2018; σελ. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Παραγωγή φυτικών δευτερογενών μεταβολιτών με χρήση βιοτεχνολογικών εργαλείων. Δεύτερος. Μεταβ.-Πηγές Εφαρμ. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Application of Metabolic Engineering to Enhance the Content of Alkaloids in Medicine Plants. Metab. Eng. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, Α.; Memelink, J. Biotechnology for the Production of Plant Secondary Metabolites. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Regulation of Tropane Alkaloid Metabolism in Plants and Plant Cell Cultures. Στη Μεταβολική Μηχανική του Δευτερογενούς Μεταβολισμού των Φυτών; Springer: Βερολίνο/Χαϊδελβέργη, Γερμανία, 2000; σελ. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Καλλιέργεια φυτικών κυττάρων για παραγωγή πακλιταξέλης και άλλων ταξανών. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591-599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, Β.; Sharma, RA Secondary Metabolites of Medicinal Plants, 4 Volume Set: Ethnapharmacological Properties, Biological Activity, and Production Strategies; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, ΗΠΑ, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Effect of Immobilization on Cell Growth and Alkaloid Contents in Cell-Aggregate Culture of Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, Ρ.; Zhou, W.; Wang, Ρ.; Wang, L.; Tang, Μ. Enhancement of Chitosanase Production by Cell Immobilization of Gongronella Sp. JG. Μπραζ. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Production of Podophyllotoxin by Immobilized Cell Cultures of Juniperus Chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134.

152. Vanisree, Μ.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Μελέτες για την παραγωγή ορισμένων σημαντικών δευτερογενών μεταβολιτών από φαρμακευτικά φυτά από καλλιέργειες φυτικών ιστών. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, ΜΑ; Ahmad, IZ; Saeed, M. Τρέχουσες προσεγγίσεις προς την παραγωγή δευτερογενών φυτικών μεταβολιτών. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, Ρ.; Bonfill, M. Living Between Two Worlds: Two-Phase Culture Systems for Producing Plant Secondary Metabolites. Κριτ. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML The Effect of Ajmalicine Spiking and Resin Addition Time on the Production of Indole Alkaloids from Catharanthus Roseus Cell Cultures. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komariah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, Ρ.; Kishor, PK Ενισχυμένη παραγωγή Plumbagin σε Immobilized Cells of Plumbago Rosea by Elicitation και in Situ Adsorption. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Klvana, Μ.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In Situ, η στρατηγική εκχύλισης επηρεάζει τις ροές παραγωγής αλκαλοειδών βενζοφαινανθριδίνης σε καλλιέργειες αιωρήματος της Eschscholtzia Californica. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, Μ.-Β.; Zhang, W.; Ruan, C. Σημαντικά βελτιωμένη παραγωγή Taxuyunnanine C σε καλλιέργειες κυτταρικού εναιωρήματος του Taxus Chinensis μέσω Εντατικοποίησης Διαδικασίας Επαναλαμβανόμενης Εκκίνησης, Τροφοδοσίας Σακχαρόζης και Επιτόπιας Προσρόφησης. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Ενισχυμένη παραγωγή ανθρακινονών από καλλιέργειες εναιωρήματος κυττάρων Morinda Elliptica που έχουν υποστεί επεξεργασία με προσροφητικό στη στρατηγική Μέσης παραγωγής. Process Biochem. 2007, 42, 757-763. [CrossRef]

Αποποίηση ευθύνης/Σημείωση εκδότη:Οι δηλώσεις, οι απόψεις και τα δεδομένα που περιέχονται σε όλες τις δημοσιεύσεις είναι αποκλειστικά του μεμονωμένου συγγραφέα ή συντελεστών και όχι του MDPI ή/και του συντάκτη. Το MDPI ή/και ο συντάκτης αποποιούνται την ευθύνη για οποιονδήποτε τραυματισμό ατόμων ή περιουσίας που προκύπτει από οποιεσδήποτε ιδέες, μεθόδους, οδηγίες ή προϊόντα που αναφέρονται στο περιεχόμενο.

【Για περισσότερες πληροφορίες:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】