8. Συμπεράσματα

Τα φυσικά προερχόμενα μόρια χρησιμοποιούνται παραδοσιακά σε προϊόντα προστασίας του δέρματος (Πίνακας 1, κατάλογος CosIng). Κατά συνέπεια, φυσικές ενώσεις που απομονώνονται και/ή παράγονται με χρήση βιοτεχνολογικών εργαλείων από μικροοργανισμούς χρησιμοποιούνται ήδη για δερματολογικούς σκοπούς σε τοπικά καλλυντικά σκευάσματα. Αυτά τα προϊόντα μπορούν να βελτιώσουν αισθητικά την εμφάνιση του δέρματος, αλλά μπορούν επίσης να αποτρέψουν ή/και να θεραπεύσουν δερματικές διαταραχές που σχετίζονται με την ηλικία. Πέρα από τα «καθιερωμένα» μόρια, υπάρχουν αρκετά μικρά μόρια και/ή ένζυμα που προέρχονται από μικροοργανισμούς που έχουν μεγάλες δυνατότητες να χρησιμοποιηθούν σε καλλυντικά ή καλλυντικά σκευάσματα (Πίνακας 1).

Σύμφωνα με σχετικές μελέτες, το κιστάνσε είναι ένα κοινό βότανο που είναι γνωστό ως «το θαυματουργό βότανο που παρατείνει τη ζωή». Το κύριο συστατικό του είναισιστανοζίτη, που έχει διάφορα αποτελέσματα όπως π.χαντιοξειδωτικό, αντιφλεγμονώδη, καιπροαγωγή της ανοσοποιητικής λειτουργίας. Ο μηχανισμός μεταξύ cistanche καιδέρμαλεύκανσηέγκειται στην αντιοξειδωτική δράση του κιστάνιγλυκοσίδες. Η μελανίνη στο ανθρώπινο δέρμα παράγεται από την οξείδωση της τυροσίνης που καταλύεται απότυροσινάσηκαι η αντίδραση οξείδωσης απαιτεί τη συμμετοχή οξυγόνου, έτσι οι ελεύθερες ρίζες στο σώμα γίνονται ένας σημαντικός παράγοντας που επηρεάζει την παραγωγή μελανίνης. Το Cistanche περιέχει cistanoside, το οποίο είναι ένα αντιοξειδωτικό και μπορεί να μειώσει τη δημιουργία ελεύθερων ριζών στο σώμα.ανασταλτικόςμελανίνηπαραγωγή.

Κάντε κλικ στο Cistanche Powder Bulk

Για περισσότερες πληροφορίες:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Είναι ενδιαφέρον ότι αρκετά βιομόρια που περιλαμβάνονται ήδη στον Ευρωπαϊκό κατάλογο αποδεκτών συστατικών καλλυντικών (CosIng inventory) [14] έχουν καταχωριστεί για μία από τις βιολογικές τους δραστηριότητες, αλλά χρησιμοποιούνται διαφορετικά σε καλλυντικές εφαρμογές. Χαρακτηριστικό παράδειγμα είναι το κοζικό οξύ, το οποίο έχει καταχωρηθεί ως «αντιοξειδωτικό», ενώ η κύρια εφαρμογή στα καλλυντικά είναι η ισχυρή αντιτυροσινάση δράση του και συνεπώς η εφαρμογή του ως λευκαντικού του δέρματος (Πίνακας 1).

Λαμβάνοντας υπόψη την τεράστια μικροβιακή βιοποικιλότητα και τη μικροβιακή προσαρμογή σε σχεδόν οποιοδήποτε περιβάλλον στη γη, είναι αναμενόμενο ότι τα μικρόβια αντιπροσωπεύουν έναν εξαιρετικό κατάλογο δομικών ικριωμάτων βιομορίων με δυνητικές προστατευτικές δραστηριότητες του δέρματος. Αν και η έρευνα για το θαλάσσιο περιβάλλον άρχισε να ταιριάζει αργότερα με το χερσαίο περιβάλλον, έχουμε αρκετές περιπτώσεις όπου οι καλλυντικές εφαρμογές και οι πατέντες είναι υπέρ των μικροοργανισμών που προέρχονται από τη θάλασσα. Όπως αναφέρθηκε στην περίπτωση των ΜΑΑ που είναι γνωστά για τη φωτοπροστατευτική τους δράση, περιλαμβάνονται σε αρκετές πατέντες για φυσικά φίλτρα UV. Ωστόσο, τα περισσότερα από αυτά αναπτύχθηκαν με μικροοργανισμούς από θαλάσσιο περιβάλλον (72,2 τοις εκατό), ενώ τα διπλώματα ευρεσιτεχνίας που αναπτύχθηκαν σε μικροοργανισμούς χερσαίων και γλυκών υδάτων δεν ξεπέρασαν το 21,4 τοις εκατό και το 2,4 τοις εκατό, αντίστοιχα [135]. Αυτή η μελέτη αντικατοπτρίζει ότι μέχρι σήμερα, σε ορισμένες περιπτώσεις το χερσαίο περιβάλλον έχει παραμεληθεί.

Σύγκρουση συμφερόντων:Οι συγγραφείς δηλώνουν ότι δεν υπάρχει σύγκρουση συμφερόντων.

Συντομογραφίες

UVB υπεριώδες Β

βιβλιογραφικές αναφορές

1. Ma, Τ.; Deng, Ζ.; Liu, T. Στρατηγικές μικροβιακής παραγωγής και εφαρμογές λυκοπενίου και άλλων τερπενοειδών. World J. Microbiol. Biotechnol. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, Α.; Danovaro, R. Μόρια που προέρχονται από τα θαλάσσια μικροβιακά και η πιθανή χρήση τους σε καλλυντικά και καλλυντικά προϊόντα. Mar. Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Lobanovska, Μ.; Pilla, G. Penicillin's ανακάλυψη και αντοχή στα αντιβιοτικά: μαθήματα για το μέλλον; J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, Α.; Prabakarana, P. Actinomycetes, and Drug-An Overview. Είμαι. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. Berdy, J. Bioactive microbial metabolites. J. Antibiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, Α.; Vecino, Χ.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, ΑΒ; Rodrigues, LR Νέα καλλυντικά σκευάσματα που περιέχουν βιοεπιφανειοδραστικό από Lactobacillus paracasei. Colloids Surf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Αργυροπούλου, Α.; Αλιγιάννης, Ν.; Τρουγάκος, Ι.Π. Σκαλτσούνης, AL Φυσικές ενώσεις με αντιγηραντική δράση. Nat. Κέντρο. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, Μ.; Jansen-Durr, P. Μοριακοί μηχανισμοί γήρανσης των δερματικών ινοβλαστών που προκαλείται από την UVB και η σημασία του για τη φωτογήρανση του ανθρώπινου δέρματος. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Στοχεύοντας τα γηρασμένα κύτταρα: Πιθανές συνέπειες για την καθυστέρηση της γήρανσης του δέρματος: Μια μίνι ανασκόπηση. Γεροντολογία 2016, 62, 513–518.

10. Τρουγάκος, Ι.Π. Sesti, F.; Τσακίρη, Ε.; Γοργούλης, VG Μη ενζυματικές μετα-μεταφραστικές τροποποιήσεις πρωτεΐνης και απορρύθμιση δικτύου πρωτεόστασης στην καρκινογένεση. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Σκληρού, Α.; Παπανάγνου, ED; Φωκιαλάκης, Ν.; Τρουγάκος, Ι.Π. Χημειοπρόληψη Καρκίνου μέσω ενεργοποίησης πρωτεοστατικών μονάδων. Cancer Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Εκθέσεις Έρευνας Αγοράς. (πρόσβαση στις 22 Αυγούστου 2017).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Moslem, MA Fungi—Μια ασυνήθιστη πηγή για καλλυντικά. Μυκητιασικοί Δύτες. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. Απογραφή CosIng. Διαθέσιμο στο διαδίκτυο: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (πρόσβαση στις 22 Μαρτίου 2018).

15. Chai, TT; Law, YC; Wong, FC; Kim, SK Ανακάλυψη αντιοξειδωτικών πεπτιδίων από βρώσιμα θαλάσσια ασπόνδυλα, υποβοηθούμενη από ένζυμα: Ανασκόπηση. Mar. Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG μιτοχόνδρια θηλαστικών και γήρανση: μια ενημέρωση. Κύτταρο. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, Ι.; Indrayanto, G. Φυσικά αντιοξειδωτικά στα καλλυντικά. Κουμπί κολάρου. Nat. Κέντρο. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. Abramoviˇc, H.; Grobin, Β.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. Συνάφεια και τυποποίηση in vitro αντιοξειδωτικών δοκιμασιών: ABTS, DPPH και Folin–Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, ΥΖ; Xing, J. Μια πιθανή αντιοξειδωτική πηγή: ενδοφυτικοί μύκητες από φαρμακευτικά φυτά. Οικον. Bot. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, Τ.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Μοριακό προφίλ και αντιοξειδωτικό καθώς και το αντιβακτηριακό δυναμικό του ενδοφυτικού μύκητα που παράγει πολυφαινόλη-Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mycology 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Αντιοξειδωτικές ιδιότητες της Σπιρουλίνας (Arthospira) platensis που καλλιεργείται κάτω από διαφορετικές θερμοκρασίες και καθεστώτα αζώτου. Μπραζ. Αψίδα. Biol. Τεχνολ. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Αντιοξειδωτική δράση του μικροφύκους Chlorella vulgaris που καλλιεργήθηκε σε ειδικές συνθήκες. Περικάρπιο. Chim. Αγρόκτημα. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Αντιριζικές και αντιοξειδωτικές δράσεις διαφορετικών εκχυλισμάτων Spirulina platensis κατά των αναλύσεων ριζών DPPH και ABTS. Indian J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. Goiris, Κ.; Muylaert, Κ.; Voorspoels, S.; Noten, Β.; De Paepe, D.; GJ, Β.; De Cooman, L. Ανίχνευση φλαβονοειδών σε μικροφύκη από διαφορετικές εξελικτικές γενεές. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. Jerez-Martel, Ι.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, Μ.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Φαινολικό προφίλ και αντιοξειδωτική δράση ακατέργαστων εκχυλισμάτων από στελέχη μικροφυκών και κυανοβακτηρίων. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Αντιοξειδωτικές ιδιότητες και πολυφαινολική περιεκτικότητα σε επίγεια κυανοβακτήρια. 3 Βιοτεχνολογία. 2017. [CrossRef]

27. Liu, Υ.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, Η.; Zhang, D.; Han, X. Απομόνωση και ταυτοποίηση ενδοφύτων που παράγουν ρεσβερατρόλη από οινοποιήσιμα σταφύλια Cabernet Sauvignon. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Shi, J.; Zeng, Q.; Liu, Υ.; Παν, Ζ. Alternaria sp. MG1, ένας μύκητας που παράγει ρεσβερατρόλη: απομόνωση, ταυτοποίηση και βέλτιστες συνθήκες καλλιέργειας για την παραγωγή ρεσβερατρόλης. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA Αντιγηραντικές ιδιότητες της ρεσβερατρόλης: ανασκόπηση και αναφορά μιας ισχυρής νέας αντιοξειδωτικής σύνθεσης φροντίδας του δέρματος. J. Cosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Υ. Βιομετατροπή ρεσβερατρόλης χρησιμοποιώντας κύτταρα ηρεμίας μη γενετικά τροποποιημένης Alternaria sp. Biotechnol. Appl. Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. An, SM; Koh, JS; Το Boo, YC P-κουμαρικό οξύ όχι μόνο αναστέλλει τη δραστηριότητα της ανθρώπινης τυροσινάσης in vitro αλλά και τη μελανογένεση σε κύτταρα που εκτίθενται σε UVB. Phytother. Res. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourith, Ν.; Kanlayavattanakul, Μ. Αντιοξειδωτικές δραστηριότητες και φαινολικές ουσίες του σπόρου Passiflflora edulis που ανακτήθηκε από το υπόλειμμα παραγωγής χυμού. J. Oleo. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. Lopez-Burillo, S.; Tan, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ Μελατονίνη, ξανθουρενικό οξύ, ρεσβερατρόλη, EGCG, βιταμίνη C και άλφα-λιποϊκό οξύ μειώνουν διαφορικά την οξειδωτική βλάβη του DNA που προκαλείται από τα αντιδραστήρια Fenton: μια μελέτη των ατομικών και συνεργιστικών δράσεων τους. J. Pineal. Res. 2003, 34, 269-277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, Η.; Kubo, I. Η ρεσβερατρόλη ως αναστολέας τύπου kcat για τυροσινάση: ενισχυμένος αναστολέας μελανογένεσης. Bioorg. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. Li, Μ.; Kildegaard, KR; Chen, Υ.; Rodriguez, Α.; Borodina, Ι.; Nielsen, J. De novo παραγωγή ρεσβερατρόλης από γλυκόζη ή αιθανόλη από κατασκευασμένο Saccharomyces cerevisiae. Metab. Eng. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, Τ.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Παραγωγή ρεσβερατρόλης υψηλής απόδοσης σε κατασκευασμένο Escherichia coli. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

37. Sydor, Τ.; Schaeffer, S.; Boles, E. Σημαντική αύξηση στην παραγωγή ρεσβερατρόλης από ανασυνδυασμένα στελέχη βιομηχανικής ζύμης με τη χρήση του πλούσιου μέσου. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, Α.; Bonadei, Μ.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Βακτήρια που σχετίζονται με φύλλα από διαγονιδιακή λευκή λεύκα που παράγουν ενώσεις που μοιάζουν με ρεσβερατρόλη: απομόνωση, μοριακός χαρακτηρισμός και αξιολόγηση της ανοχής στο οξειδωτικό στρες. Μπορώ. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. Δευτερογενείς μεταβολίτες από το ενδοφυτικό Botryosphaeria dothidea του Melia azedarach και η αντιμυκητιακή, αντιβακτηριακή, αντιοξειδωτική και κυτταροτοξική δράση τους. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Υ.; Meng, J.; Fu, Χ.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, Μ.; Peng, Υ.; Zhou, L. Αντιμικροβιακές και αντιοξειδωτικές δραστηριότητες και επίδραση της προσθήκης 1-εξαδεκενίου στις αποδόσεις παλμαρουμυκίνης C2 και C3 σε υγρή καλλιέργεια ενδοφυτικού μύκητα Berkleasmium sp. Dzf12. Molecules 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Ο αντιοξειδωτικός ρόλος των συμπληρωμάτων γλουταθειόνης και Ν-ακετυλο-κυστεΐνης και το οξειδωτικό στρες που προκαλείται από την άσκηση. J. Int. Soc. Sports Nutr. 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. Glutathione ως λευκαντικός παράγοντας δέρματος: γεγονότα, μύθοι, στοιχεία και διαμάχες. Indian J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. Fei, L.; Wang, Υ.; Chen, S. Βελτιωμένη παραγωγή γλουταθειόνης με έκφραση γονιδίου στο Pichia pastoris. Βιοδιεργασία. Biosyst. Eng. 2009, 32, 729-735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, Η.; Li, Ζ.; Ye, Q. Ετερόλογη έκφραση γονιδίου gshF σε διάφορα συστήματα φορέων σε Escherichia coli για ενισχυμένη παραγωγή γλουταθειόνης. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. Palozza, Ρ.; Η Krinsky, η NI ασταξανθίνη και η κανθαξανθίνη είναι ισχυρά αντιοξειδωτικά σε ένα μοντέλο μεμβράνης. Αψίδα. Biochem. Biophys. 1992, 267, 291-295. [CrossRef] 46. Yamamoto, Κ.; Hara, KY; Morita, Τ.; Nishimura, Α.; Sasaki, D.; Ishii, J. Ενίσχυση της παραγωγής ασταξανθίνης σε Xanthophyllomyces dendrorhous με αποτελεσματική μέθοδο για την πλήρη διαγραφή γονιδίων. Microb. Cell Fact. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Επίδραση των συνθηκών καλλιέργειας στην ανάπτυξη πράσινων φυκών - Haematococcus pluvialis και παραγωγή ασταξανθίνης. Acta Physiol. Φυτό. 2002, 24, 323-329. [CrossRef]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Αντιοξειδωτική δράση ενώσεων β-καροτίνης σε διαφορετικές in vitro δοκιμασίες. Molecules 2011, 16, 1055-1069. [CrossRef]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, Χ.; Hu, Μ.; Deng, Z. Στοχευμένη μηχανική και κλιμάκωση της υπερπαραγωγής λυκοπενίου σε Escherichia coli. Επεξεργάζομαι, διαδικασία. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, Α. Ρ, Reinvestigation of Brevibacterium sp. στέλεχος KY-4313 ως πηγή κανθαξανθίνης. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Αντιοξειδωτική δράση της καροτενοειδούς λουτεΐνης in vitro και in vivo. Indian J. Εχρ. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, Η.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Περιεκτικότητα σε καροτενοειδή των μικροφυκών χλωροφύτων: παράγοντες που καθορίζουν τη συσσώρευση λουτεΐνης στο Murielopsis sp. (Χλωρόφυτα). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalan, V.; Τριπάθι, Σ.Κ. Nahar, Ρ.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Χαρακτηρισμός ισομερών κανθαξανθίνης που απομονώθηκαν από νέο έδαφος Dietzia sp. και την αντιοξειδωτική τους δράση. J. Microbiol. Biotechnol. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Αξιολόγηση της in vitro αντιοξειδωτικής ισχύος του εξωπολυσακχαρίτη από το ενδοφυτικό Fusarium solani SD5. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; Zou, Τ.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Αντιοξειδωτική και προστατευτική δράση από βλάβες στο DNA των εξωπολυσακχαριτών από το ενδοφυτικό βακτήριο Bacillus cereus SZ1. Molecules 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Ye, H.; Sun, Υ.; Lu, Ζ.; Zeng, X. Παραγωγή, χαρακτηρισμός και αντιοξειδωτικές δραστηριότητες in vitro εξωπολυσακχαριτών από το ενδοφυτικό βακτήριο Paenibacillus polymyxa EJS-3. Υδατάνθρακες. Πολυμ. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. Liu, J.; Luo, J.; Ye, H.; Sun, Υ.; Lu, Ζ.; Zeng, X. Βελτιστοποίηση μέσου και δομικός χαρακτηρισμός εξωπολυσακχαριτών από το ενδοφυτικό βακτήριο Paenibacillus polymyxa EJS-3. Υδατάνθρακες. Πολυμ. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. Επισκόπηση των εξωκυτταρικών πολυμερών ουσιών μικροφυκών (EPS) και των εφαρμογών τους. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. Chen, Υ.; Mao, W.; Tao, Η.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Δομικός χαρακτηρισμός και αντιοξειδωτικές ιδιότητες ενός εξωπολυσακχαρίτη που παράγεται από τον ενδοφυτικό μύκητα μαγγρόβιων Aspergillus sp. Υ16. Bioresour. Τεχνολ. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, PA; Iacomini, Μ. Συνθήκες καλλιέργειας για την παραγωγή ενός όξινου εξωπολυσακχαρίτη από το αζωτοδεσμευτικό βακτήριο Burkholderia tropica. Μπορώ. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, Ο.; Mnari, Α.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Μερικός χαρακτηρισμός και αντιοξειδωτικές και αντιπολλαπλασιαστικές δράσεις των υδατικών εξωκυτταρικών πολυσακχαριτών από τα θερμόφιλα μικροφύκη Graesiella sp. Συμπλήρωμα BMC. Εναλλακτική. Med. 2016. [CrossRef]

62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, Ν.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-φυκοκυανίνη: μια χοληπρωτεΐνη με αντιοξειδωτική, αντιφλεγμονώδη και νευροπροστατευτική δράση. Curr. Protein Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Chitosan Παραγωγή από ψυχοανεκτική Rhizopus oryzae σε μη στείρες συνθήκες ανοιχτής ζύμωσης. Int. J. Biol. Macromol. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Ενισχυμένη παραγωγή αιθανόλης και χιτοζάνης από άχυρο σίτου της Mucor indicus με ελάχιστη κατανάλωση θρεπτικών συστατικών. Επεξεργάζομαι, διαδικασία. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Sharmila, Κ.; Kalaiselvam, Μ.; Raffifffi, SM Παραγωγή χιτοζάνης από ενδολιθικούς μύκητες που απομονώνονται από το περιβάλλον των μαγγροβίων και η ανταγωνιστική του δράση. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. Ordonñez, L.; Garciía, J.; Bolanños, G. Παραγωγή συμπλεγμάτων χιτίνης και χιτίνης-γλυκάνης από βιομάζα Aspergillus niger χρησιμοποιώντας υποκρίσιμο νερό. In Proceedings of the Ibero-American Conference on Supercritical Fluids, Cartagena, Κολομβία, 1–5 Απριλίου 2013.

67. Guo, J.; Rao, Ζ.; Yang, Τ.; Man, Ζ.; Xu, Μ.; Zhang, X. Υψηλού επιπέδου παραγωγή μελανίνης από ένα νέο προϊόν απομόνωσης του Streptomyces kathirae. FEMS Microbiol. Κάτοικος της Λατβίας. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, Κ.; Mishra, S. Παραγωγή μελανίνης από μικροβιακή απομόνωση εδάφους σε εκχύλισμα απορριμμάτων φρούτων: βελτιστοποίηση βασικών παραμέτρων σε δύο βήματα. Biotechnol. Rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Υ.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, Ε.; Foreman, CM Ultrafast απενεργοποίηση διεγερμένης κατάστασης της βακτηριακής χρωστικής βιολακεΐνης. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, WA; Yusof, NZ; Nordin, Ν.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Παραγωγή και χαρακτηρισμός βιολακεΐνης από τοπικά απομονωμένο Chromobacterium violaceum που καλλιεργείται σε γεωργικά απόβλητα. Appl. Biochem. Biotechnol. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. Wang, Η.; Jiang, Ρ.; Lu, Υ.; Ruan, Ζ.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Βελτιστοποίηση των συνθηκών καλλιέργειας για παραγωγή βιολακεΐνης από ένα νέο στέλεχος Duganella sp. Β2. Biochem. Eng. J. 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. Pathak, J.; Sonker, AS; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Διαλογή και μερικός καθαρισμός της φωτοπροστατευτικής χρωστικής σκυτονεμίνης από κυανοβακτηριακές κρούστες που κατοικούν στα ιστορικά μνημεία μέσα και γύρω από το Βαρανάσι της Ινδίας. Microbiol. Res. 2017. [CrossRef]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; Αυτός είναι.; Yan, X. Προσδιορισμός οξειδωμένης σκυτονεμίνης σε Nostoc κοινότητα Vauch που καλλιεργήθηκε σε διαφορετικές συνθήκες με υγρή χρωματογραφία υψηλής απόδοσης σε συνδυασμό με τριπλή τετραπολική φασματομετρία μάζας. J. Appl. Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. Nakashima, Τ.; Anzai, Κ.; Kuwahara, Ν.; Komaki, Η.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Φυσικοχημικοί χαρακτήρες ενός αναστολέα τυροσινάσης που παράγεται από Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. ΒίοΙ. Pharm. Ταύρος. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, Μ.; Ozdal, OG; Algur, OF Ενισχυμένη παραγωγή προδιγιοσίνης από τη Serratia marcescens MO-1 με χρήση πεπτόνης κέρατος κριού. Μπραζ. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Boric, Μ.; Danevcic, Τ.; Stopar, D. Prodigiosin από Vibrio sp. DSM 14379; μια νέα χρωστική ουσία προστασίας από την υπεριώδη ακτινοβολία. Microb. Ecol. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. Lawrence, KP; Gacesa, R.; Long, PF; Young, AR Μοριακή φωτοπροστασία ανθρώπινων κερατινοκυττάρων in vitro από το φυσικώς απαντώμενο αμινοξύ πολυθενίου που μοιάζει με μυκοσπορίνη. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, Α. Χαρακτηρισμός ενώσεων διαλογής με υπεριώδη ακτινοβολία, αμινοξέων που μοιάζουν με μυκοσπορίνη και σκυτονεμίνης στο κυανοβακτήριο Lyngbya sp. 2555 ΝΜ. FEMS Microbiol. Ecol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, Μ.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, Μ. Φυλογενετική κατανομή μυκητιακής κυκλοσπορίνης εντός της Pucciniomycotina (Basidiomycota). Yeast (Chichester, Αγγλία) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. Kogej, Τ.; Gostincar, C.; Volkmann, Μ.; Gorbushina, AA; Gunde-Cimerman, Ν.; Kogej, Τ.; Gorbushina, AA Mycosporines in exremophilic fungi - Νέοι συμπληρωματικοί οσμολίτες; Περιβάλλω. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. Wei, S.; Xu, Ν.; Ji, Z. Identification of a kojic-acid που παράγει Aspergillus afflatus F52. Acta Microbiol. Αμαρτία. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Μελέτες πολιτιστικών συνθηκών για την παραγωγή κοτζικού οξέος από Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468-473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Βιομετασχηματισμός διαφόρων πηγών άνθρακα σε κοτζικό οξύ από ενζυμικό σύστημα δεσμευμένου σε κύτταρα του A. afflatus Link 44-1. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Ένα πολυλειτουργικό και πιθανό προστατευτικό για την υπεριώδη ακτινοβολία του δέρματος, (3R)-5-υδροξυμελλεΐνη, που παράγεται από έναν ενδολιθικό μύκητα που απομονώθηκε από την Parmotrema austrosinense. Molecules 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, Α.; Aguilera-Carbo, Α.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Υ.; Aguilar, CN Ελλαγικό οξύ Παραγωγή από Aspergillus niger σε ζύμωση στερεάς κατάστασης υπολειμμάτων ροδιού. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP Οι επιδράσεις του τοπικού L(συν) γαλακτικού οξέος και του ασκορβικού οξέος στη λεύκανση του δέρματος. Int. J. Cosmet. Sci. 1999, 21, 33-40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Μεταβολισμός ξυλόζης στον μύκητα Rhizopus oryzae: επίδραση της ανάπτυξης και της αναπνοής στην παραγωγή L και γαλακτικού οξέος. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 569-578. [CrossRef]

88. Shih, IL; Van, YT Η παραγωγή πολυ-(γ-γλουταμινικού οξέος) από μικροοργανισμούς και οι διάφορες εφαρμογές του. Bioresour. Τεχνολ. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW Ένας πιθανός μηχανισμός δράσης του αζελαϊκού οξέος στην ανθρώπινη επιδερμίδα. Αψίδα. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

90. Balina, LM; Graupe, K. Η θεραπεία του μελάσματος είναι 20 τοις εκατό αζελαϊκό οξύ έναντι κρέμας υδροκινόνης 4 τοις εκατό. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893-895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, Μ.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Προσδιορισμός αναστολέων τυροσινάσης σε καλλιέργειες Pityrosporum και μελανοκυτταροτοξική δράση τους. Χρώμα. Cell 1979, 4, 234-243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Καταλυόμενη από ένζυμο σύνθεση ηλεκτρικής βιταμίνης Ε χρησιμοποιώντας ένα χημικά τροποποιημένο κανένα άτομο-435. Πηγούνι. J. Chem. Eng. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Συγκριτικές μελέτες για την απομόνωση μεμβρανικού λιποτεϊχοϊκού οξέος από ζύμωση Lactobacillus. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Υ.; Kitagawa, Μ.; Raku, T. Enzymatic synthesis of arbutin undecylenic acid ester and inhibitory effect on mushroom tyrosinase. Biotechnol. Κάτοικος της Λατβίας. 2007, 29, 481-486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Προσδιορισμός δυνητικά ασφαλών υποσχόμενων εργοστασίων μυκητιακών κυττάρων για την παραγωγή πολυκετιδικών φυσικών χρωστικών τροφίμων με χρήση χημειοταξονομικής λογικής. Microb. Cell Fact. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Encyclopedia of Microbiology, 3rd ed.; Academic Press: New York, NY, USA, 2009; Μικροβιακές χρωστικές; σελ. 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Μια αποτελεσματική φυσική ουσία για την πρόληψη της πρόωρης φωτογήρανσης που προκαλείται από την UVA. Skin Pharmacol. Physiol. 2004, 17, 232-237. [CrossRef]

98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, Μ.; Harder, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Systems metabolic engineering of Corynebacterium glutamicum για παραγωγή της χημικής συνοδείας εκτοΐνης. Microb. Cell Fact. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Γονιδιοτοξικότητα ορατού φωτός (400–800 nm) και εκτίμηση φωτοπροστασίας τομής, L-εργοθειονεΐνη και μαννιτόλη και τέσσερα αντηλιακά. J. Photochem. Photobiol. Β. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, Ι.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli για την παραγωγή ανανεώσιμης βενζυλικής αλκοόλης. Metab. Eng. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, Η.; Xu, P. Μίμηση μιας φυσικής οδού για de novo βιοσύνθεση: παραγωγή φυσικής βανιλίνης από προσβάσιμες πηγές άνθρακα. Sci. Απ. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, Μ.; Okada, Υ.; Yoshida, Τ.; Nagasawa, Τ. Παραγωγή βανιλίνης χρησιμοποιώντας κύτταρα Escherichia coli που υπερεκφράζουν μονοοξυγενάση ισοευγενόλης Pseudomonas putida. Biotechnol. Κάτοικος της Λατβίας. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; Sun, Ζ.-Η.; Zheng, Ρ.; Zhu, L.-L. Βιομετατροπή ισοευγενόλης σε βανιλίνη από ένα νέο στέλεχος Bacillus fusiformis. Biotechnol. Κάτοικος της Λατβίας. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Σημαντική συμβολή του μονοπατιού Ehrlich για την παραγωγή 2-φαινυλαιθανόλης/αρώματος τριαντάφυλλου στο Ashbya gossypii. FEMS Yeast Res. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Μια υδατική-οργανική βιοδιεργασία δύο φάσεων για αποτελεσματική παραγωγή των χημικών φυσικών αρωμάτων 2-φαινυλαιθανόλη και 2-φαινυλ αιθυλοξικός με μαγιά. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2006, 71, 440-443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Buhler, Β.; Julsing, MK; Schmid, A. Μηχανική της παραγωγικότητας ανασυνδυασμένης Escherichia coli για σχηματισμό λιμονενίου από γλυκερόλη σε ελάχιστα μέσα. Biotechnol. J. 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, BC; Freire, G.; Almeida, RV Ενισχυμένη παραγωγή ραμνολιπιδίων από Pseudomonas aeruginosa υπερεκφράζοντας το estA σε ένα απλό μέσο. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banat, IM Μικροβιακή παραγωγή επιφανειοδραστικών ουσιών και εμπορικές δυνατότητες. Microbiol. ΜοΙ. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, Τ.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, παραγωγή καροτενοειδών CM και έκφραση γονιδίου σε ένα μεταλλαγμένο στέλεχος Xanthophyllomyces dendrorhous που υπερπαράγεται ασταξανθίνη. Αψίδα. Microbiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, Τ.; Χρήστου, Π. Διατροφικά σημαντικά καροτενοειδή ως καταναλωτικά προϊόντα. Phytochem. Αναθ. 2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. Henríquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Carotenoids in microalgae. Στα καροτενοειδή στη φύση. Strange, Ε., Εκδ.; Springer International Publishing: Νέα Υόρκη, Νέα Υόρκη, ΗΠΑ, 2016; σελ. 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, Μ.; Abdullah, ΑΑ-Α. Κυανοβακτήρια: φωτοαυτοτροφικά μικροβιακά εργοστάσια για τη βιώσιμη σύνθεση βιομηχανικών προϊόντων. J. Biomed. Biotechnol. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, Α.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Ω, DK; Kim, SW Μια ενημέρωση για την παραγωγή μικροβιακών καροτενοειδών: εφαρμογή πρόσφατων εργαλείων μεταβολικής μηχανικής. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, Α.; Aguilar, CN Βιοτεχνολογική παραγωγή καροτενοειδών από ζυμομύκητες: Επισκόπηση. Microb. Cell Fact. 2014. [CrossRef]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, Η.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Πρόσφατες εξελίξεις στους ενδοφυτικούς εξωπολυσακχαρίτες: Παραγωγή, δομικός χαρακτηρισμός, φυσιολογικός ρόλος και βιολογική δραστηριότητα. Υδατάνθρακες. Πολυμ. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST Δραστηριότητες δέσμευσης ελεύθερων ριζών εκχυλισμάτων πολυσακχαριτών μανιταριών. Life Sci. 1997, 60, 763-771. [CrossRef]

117. Jin, Μ.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1,10-φαινανθρολίνη-Fe2 συν οξειδωτική δοκιμασία ρίζας υδροξυλίου που παράγεται από H2O2/Fe. Επαιτώ. Biochem. Biophys. 1996, 23, 553-555.

118. Chen, Β.; Εσύ, W.; Huang, J.; Yu, Υ.; Chen, W. Απομόνωση και αντιοξειδωτική ιδιότητα του εξωκυτταρικού πολυσακχαρίτη από Rhodella reticulata. World J. Microbiol. Biotechnol. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Διαχείριση οξειδωτικού στρες από μικροάλγη. Μπορώ. J. Physiol. Pharmacol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Κυτοτοξικότητα των οξυριζικών και η εξέλιξη των υπεροξειδίων δισμουτάσης. Σε οξυγόνο, γονιδιακή έκφραση και κυτταρική λειτουργία. Massaro, D., Clerch, L., Eds.; Marcel Dekker: Νέα Υόρκη, Νέα Υόρκη, ΗΠΑ, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Ο ρόλος των αντιοξειδωτικών ενζύμων στην βακτηριακή αντίσταση στα οργανικά οξέα. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Μελέτες για τις ελεύθερες ρίζες, τα αντιοξειδωτικά και τους συμπαράγοντες. Clin. Interv. Aging 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, Ε.; Duong, GH; de Hulster, Ε.; Pronk, JT; van Maris, AJ Η υπερέκφραση καταλάσης μειώνει το οξειδωτικό στρες που προκαλείται από το γαλακτικό οξύ στο Saccharomyces cerevisiae. Appl. Περιβάλλω. Microbiol. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. Shao, Ν.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, Α. Ο συνεργάτης των φωτοσυνθετικών ηλεκτρονίων επηρεάζει τη σηματοδότηση H2O2 με την απενεργοποίηση της καταλάσης στο Chlamydomonas reinhardtii. Planta 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. Ευρωπαϊκή Επιτροπή. Απαγόρευση δοκιμών σε ζώα. Διαθέσιμο στο διαδίκτυο: https://ec.europa.eu/growth/sectors/ cosmetics/animal-testing_en (πρόσβαση στις 14 Απριλίου 2019).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Μικροβιακά υπεριώδη αντηλιακά. Nat. Rev. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. Plonka, PM; Grabacka, M. Σύνθεση μελανίνης σε μικροοργανισμούς-βιοτεχνολογικές και ιατρικές πτυχές. Acta Biochim. Πολ. 2006, 53, 429-443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadeval, A. Μυκητιακή μελανίνη: Τι γνωρίζουμε για τη δομή; Εμπρός. Microbiol. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, Ε.; Ortiz, A. Melanin: μια φωτοπροστασία για βιοπαρασιτοκτόνα που βασίζονται στον Bacillus thuringiensis. Biotechnol. Κάτοικος της Λατβίας. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, Κ.; Nazififi, E.; Hirai, Υ.; Wada, Ν.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. Η κυανοβακτηριακή χρωστική ουσία που απορροφά την υπεριώδη ακτινοβολία σκυτονεμίνη εμφανίζει δραστικότητα δέσμευσης ριζών. J. Gen. Appl. Microbiol. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Στοιχεία για έναν ρόλο υπεριώδους αντηλιακού της εξωκυτταρικής χρωστικής σκυτονεμίνης στο επίγειο κυανοβακτήριο Chlorogloeopsis sp. Photochem. Photobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Κυανοβακτηριακή αντηλιακή σκυτονεμίνη: ρόλος στη φωτοπροστασία και στη βιοϊατρική έρευνα. Appl. Biochem. Biotechnol. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. Darshan, Ν.; Manonmani, HK Prodigiosin, και οι πιθανές εφαρμογές της. J. Food Sci. Τεχνολ. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. Duran, Ν.; Justo, GZ; Duran, Μ.; Brocchi, Μ.; Cordi, L.; Tasic, L. Advances in Chromobacterium violaceum και ιδιότητες της βιολακεΐνης-Ο κύριος δευτερογενής μεταβολίτης του: Ανασκόπηση. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. Colabella, F.; Moline, Μ.; Libkind, D. Αντιηλιακά μικροβιακής προέλευσης UV: κυκλοσπορίνη και αμινοξέα που μοιάζουν με μυκοσπορίνη. Πρόσφατο Pat. Biotechnol. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. Effects of salinity and ultraviolet radiation on the bioaccuulation of mycosporine-like amino acids in Artemia from Lake Urmia (Iran). Photochem. Photobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. Gorbushina, AA; Whitehead, Κ.; Dornieden, Τ.; Niesse, Α.; Schulte, Α.; Hedges, JI Μαύρες αποικίες μυκήτων ως μονάδες επιβίωσης: υφική ​​κυκλοσπορίνη που συντίθεται από μικροαποικιακούς μύκητες που κατοικούν σε βράχους. Μπορώ. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Η μελανογένεση και οι μηχανισμοί των παραγόντων λεύκανσης του δέρματος-υπάρχουσες και νέες προσεγγίσεις. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, Ν.; Vilanova, J.; Pavel, S. Το κυνήγι για φυσικούς λευκαντικούς παράγοντες δέρματος. Int. J. ΜοΙ. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, Τ.; Maniccam, Μ.; Namasivayam, V. Παράγοντες λεύκανσης δέρματος: προοπτική ιατρικής χημείας των αναστολέων τυροσινάσης. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. Pillaiyar, Τ.; Namasivayam, V.; Maniccam, Μ.; Jung, SH Inhibitors of Melanogenesis: An Updated Review. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH Ανασταλτικές δραστηριότητες παραγώγων φλαβανόνης που απομονώθηκαν από Sophora flavecens για μελανογένεση. Ταύρος. Korean Chem. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, Μ.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Survey και μηχανισμός αποχρωματισμού και λεύκανσης του δέρματος. Phytother. Res. 2006, 20, 921-934. [CrossRef]

144. Rosfarizan, Μ.; Mohd, SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kojic acid: Εφαρμογές και ανάπτυξη της διαδικασίας ζύμωσης για παραγωγή. Biotech. ΜοΙ. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Δράση ελλαγικού οξέος στο μονοπάτι βιοσύνθεσης της μελανίνης. J. Dermatol. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, Α.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Μυκητιακή βιοαποικοδόμηση τανινών από θάμνο κρεόσωτου (Larrea tridentata) και θάμνο πίσσας (Fluorensia cernua) για παραγωγή γαλλικού και ελλαγικού οξέος. Food Technol. Biotechnol. 2008, 46, 213-217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, Α.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Ellagic acid: Βιολογικές ιδιότητες και βιοτεχνολογική ανάπτυξη για διαδικασίες παραγωγής. Αφρ. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, Μ.; Passi, S.; Ζήνα, Γ. Θεραπεία αζελαϊκού οξέος σε διαταραχές μελάγχρωσης. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Αζελαϊκό οξύ: Ιδιότητες και τρόπος δράσης. Skin Pharmacol. Physiol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS Υπερμελάγχρωση δέρματος με μελανίνη: μέλασμα, τοπική θεραπεία με αζελαϊκό οξύ και άλλες θεραπείες. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, Α.; Ohashi, Α.; Sato, Η.; Ochiai, Υ.; Ichihashi, Μ.; Funasaka, Υ. Η ανασταλτική επίδραση του γλυκολικού οξέος και του γαλακτικού οξέος στη σύνθεση μελανίνης σε κύτταρα μελανώματος. Exp. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, Β.; Kelly, JM Παραγωγή γαλακτικού οξέος από ανανεώσιμα υλικά από μύκητες Rhizopus. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. Liu, Χ.; Liu, F.; Liu, S.; Li, Η.; Ling, Ρ.; Zhu, X. Το πολυ-γ-γλουταμινικό από Bacillus subtilis αναστέλλει τη δραστηριότητα της τυροσινάσης και τη μελανογένεση. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, Ι.; André, Ρ.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Παραγωγή λευκαντικού ενζύμου μελανίνης μυκητιακής προέλευσης και εφαρμογή του στα καλλυντικά. Biotechnol. Βιοδιεργασία. Eng. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. Αντωνοπούλου, Ι.; Varriale, S.; Τοπάκας, Ε.; Rova, U.; Χριστακόπουλος, Π.; Faraco, V. Ενζυματική σύνθεση βιοδραστικών ενώσεων με υψηλές δυνατότητες για καλλυντική εφαρμογή. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. Sugimoto, Κ.; Nomura, Κ.; Nishimura, Τ.; Kiso, Τ.; Sugimoto, Κ.; Kuriki, Τ. Syntheses of alpha-arbutin-alpha-glycosides and their inhibitory effect on human tyrosinase. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272-276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid biosurfactants-παρελθόν, παρόν και μελλοντικό σενάριο της παγκόσμιας αγοράς. Εμπρός. Microbiol. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfactants: βιώσιμη αντικατάσταση των χημικών τασιενεργών; Biotechnol. Κάτοικος της Λατβίας. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Rhamnose λιπίδια-βιοσύνθεση, μικροβιακή παραγωγή και δυνατότητα εφαρμογής. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. Haba, Ε.; Pinazo, Α.; Jauregui, Ο.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, Α. Φυσικοχημικός χαρακτηρισμός και αντιμικροβιακές ιδιότητες ραμνολιπιδίων που παράγονται από Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnol. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Χρήση ραμνολιπιδίων στην επούλωση πληγών, στη θεραπεία του εγκαυματικού σοκ, της αθηροσκλήρωσης, στις μεταμοσχεύσεις οργάνων, στην κατάθλιψη, στη σχιζοφρένεια και στα καλλυντικά. Ευρεσιτεχνία ΗΠΑ Αρ. US7262171B1. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, Ρ.; Beniwal, V.; Sharma, AK Μικροβιακές χρωστικές ως φυσικές πηγές χρώματος: τρέχουσες τάσεις και μελλοντικές προοπτικές. J. Food Sci. Τεχν. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Υ.; Venkatachalam, Μ.; Lebeau, J.; Fouillaud, Μ.; Dufossé, L. Χρωστικές και χρωστικές από νηματώδεις μύκητες. Fungal Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvão, LR; Cardoso, PG Παραγωγή και χημικός χαρακτηρισμός χρωστικών σε νηματώδεις μύκητες. Μικροβιολογία 2016, 162, 12–22.

165. Rao, Ν.; Prabhu, Μ.; Xiao, Μ.; Li, WJ Μυκητιακές και βακτηριακές χρωστικές: Δευτερογενείς μεταβολίτες με ευρείες εφαρμογές. Εμπρός. Microbiol. 2017. [CrossRef]

166. Kuddus, Μ.; Singh, Ρ.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. Πρόσφατες εξελίξεις στην παραγωγή και βιοτεχνολογικές εφαρμογές της C-φυκοκυανίνης. Biomed. Res. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, Μ. Microalgae Nutraceuticals. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Ετεροτροφικές τροφοδοτούμενες παρτίδες υψηλής πυκνότητας και συνεχείς καλλιέργειες Galdieria sulphuraria και παραγωγή φυκοκυανίνης. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Μικροβιακή παραγωγή αρωματικών και γευστικών ενώσεων. Curr. Γνώμη. Chem. Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Παραγωγή αρωματικών ενώσεων τροφίμων: μικροβιακές και ενζυμικές μεθοδολογίες. Food Technol. Biotechnol. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, Β.; Bremer, E. Πρόσληψη και σύνθεση συμβατών διαλυμένων ουσιών ως αντιδράσεις μικροβιακού στρες σε περιβάλλοντα υψηλής ωσμωτικότητας. Αψίδα. Microbiol. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Ενώσεις γεύσης που παράγονται από μύκητες, ζυμομύκητες και βακτήρια. Handb. Food Prod. Manuf. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Biofflaours and fragrances via fungi and their ένζυμα. Μυκητιασικοί Δύτες. 2003, 13, 153-166.

174. Carrau, F.; Boido, Ε.; Dellacassa, E. Yeast Diversity, and Flavor Compounds. Σε Μυκητιακούς Μεταβολίτες; Mérillon, JM, Ramawat, K., Eds.; Springer International Publishing: Cham, Switzerland, 2016; σελ. 1–29.

175. Priefert, Η.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Βιοτεχνολογική παραγωγή βανιλίνης. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001, 56, 296-314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasova, Υ.; Prather, KLJ Σύνθεση και συσσώρευση αρωματικών αλδεΰδων σε κατασκευασμένο στέλεχος Escherichia coli. Μαρμελάδα. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Bath, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ Μεταβολική μηχανική της Escherichia coli για παραγωγή λιμονενίου και περιλλυλικής αλκοόλης. Metab. Eng. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. Okino, Τ.; Qi, S.; Matsuda, Η.; Murakami, Μ.; Yamaguchi, Κ. Νοστοπεπτίνες Α και Β, αναστολείς ελαστάσης από το κυανοβακτήριο Nostoc minutum. J. Nat. Κέντρο. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. Γεωργουσάκη, Κ.; DePedro, Ν.; Chinchilla, Α.; Αλιαγιάννης, Ν.; Vicente, F.; de Castro, Ρ.; Φωτεινός, Σ.; Genilloud, Ο.; Φωκιαλάκης, Ν. Έλεγχος υψηλής απόδοσης μικροβιακής βιοποικιλότητας για την ανακάλυψη νέων καλλυντικών παραγόντων. Panta Med. 2015. [CrossRef]

180. Γεωργουσάκη, Κ.; Τσαφαντάκης, Ν.; Χειλάρη, Α.; Gumeni, S.; González, Ι.; González, V.; José, RT; Genilloud, Ο.; Φωτεινός, Σ.; Τρουγάκος, Ι.; et al. Ανακάλυψη νέων καλλυντικών παραγόντων από ενδοφυτικούς μικροοργανισμούς της ισπανικής βιοποικιλότητας. Planta Med. 2017. [CrossRef]

181. Συκιώτης, Γ.Π. Bohmann, D. Μεταγραφικοί παράγοντες cap'n'collar που ενεργοποιούνται από το στρες στη γήρανση και στην ανθρώπινη ασθένεια. Sci. Σήμα. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, Μ.; Cavinato, Μ.; Τρουγάκος, Ι.Π. Jansen-Durr, P. Στόχευση μηχανισμών ποιοτικού ελέγχου πρωτεΐνης από φυσικά προϊόντα για την προώθηση της υγιούς γήρανσης. Molecules 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Το Cuervo, η AM Proteostasis και το γηράσκον πρωτεόμιο στην υγεία και τις ασθένειες. J. Gerontol. Α ΒίοΙ. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, Ρυθμιστές πρωτεασώματος CH: ενεργοποιητές και αναστολείς. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931-939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, Μ.; Stien, D. Βετουλινικό οξύ, το πρώτο τριτερπενοειδές τύπου λούπινου που απομονώθηκε και από ένα Phomopsis sp. και το φυτό ξενιστή του Diospyros carbonara Benoist. Chem. Βιοδύτες. 2017. [CrossRef] [PubMed]

Για περισσότερες πληροφορίες: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501